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兼并引物PCR擴(kuò)增效率提升研究論文

時(shí)間:2021-06-20 15:01:48 論文 我要投稿

兼并引物PCR擴(kuò)增效率提升研究論文

  克隆非模式生物的基因,往往要先用到兼并引物。兼并引物(亦稱(chēng)簡(jiǎn)并引物,degenerate primer),是多種不同但有相關(guān)性的引物的混合物。利用基因或其編碼的蛋白質(zhì)在進(jìn)化上的相關(guān)性進(jìn)行序列比對(duì)后,根據(jù)保守區(qū)域設(shè)計(jì)的引物,或者根據(jù)氨基酸序列設(shè)計(jì)的引物,一般會(huì)有一定的兼并度。利用兼并引物做PCR擴(kuò)增時(shí),由于兼并引物實(shí)際是多種引物的混合物,其中真正能和靶基因序列較好配對(duì)的只有少數(shù)幾種,因此降低了PCR擴(kuò)增中的有效引物濃度,導(dǎo)致擴(kuò)增效率下降;同時(shí)也會(huì)顯著提高其與非靶基因序列的配對(duì),導(dǎo)致特異性下降,非靶基因擴(kuò)增大量增加,當(dāng)為了提高兼并引物的濃度以提高PCR擴(kuò)增效率時(shí),這點(diǎn)尤為明顯。目前,能夠改善兼并引物擴(kuò)增的方法并不多,Knoth等用次黃嘌呤堿基替代引物中的兼并堿基,能夠提高擴(kuò)增效率[1],Don等的降落PCR(touchdown PCR)能夠減少PCR的條件優(yōu)化同時(shí)提高靶基因的擴(kuò)增效率[2],也能提高兼并引物的擴(kuò)增效率。然而這兩種方法都不能完全解決兼并引物自身固有的缺點(diǎn),其中,次黃嘌呤堿基由于能和不同堿基配對(duì),實(shí)際上會(huì)增加非特異性擴(kuò)增,而降落PCR對(duì)兼并引物PCR的改善很多時(shí)候并不明顯。因此,需要一種既高效、又具有特異性的兼并引物PCR擴(kuò)增方法。

兼并引物PCR擴(kuò)增效率提升研究論文

  抑制性PCR是一種特殊的PCR,它能利用單引物與待擴(kuò)增片段的末 端反向重復(fù) 序列結(jié)合 進(jìn)行擴(kuò)增[3].PCR擴(kuò)增過(guò)程中,末端反向重復(fù)序列能夠互補(bǔ)配對(duì),形成一種類(lèi)似鍋柄狀的結(jié)構(gòu),模板內(nèi)部的這種配對(duì)跟其與引物的配對(duì)存在競(jìng)爭(zhēng)關(guān)系,因而會(huì)在一定程度上抑制PCR的擴(kuò)增效率,抑制性作用的強(qiáng)弱受到末端反向重復(fù)序列的長(zhǎng)度、引物濃度以及退火溫度等因素的影響,其中長(zhǎng)末端反向重復(fù)序列、低引物濃度和低退火溫度都能增強(qiáng)抑制性PCR的'作用[3].本研究改進(jìn)兼并引物的設(shè)計(jì),將降落PCR與抑制性PCR有機(jī)結(jié)合起來(lái),以提高兼并引物PCR擴(kuò)增的特異性和效率。

  1材料和方法

  1.1微生物基因組DNA抽提

  實(shí)驗(yàn)樣品為溫泉 的 底 泥 樣 品。樣 品 在 液 氮 中 研 磨 后,加 入10倍 體 積 的CTAB DNA抽 提 緩 沖 液(100mmol/L Tris-Cl pH8.0,10mmol/L EDTA,1.5mol/L NaCl,2% CTAB),然后加入0.1mg/mL的蛋白酶K,55 ℃水浴鍋中溫浴過(guò)夜。加入等體積的苯酚氯仿混勻,10 000r/min離心10min,取上清,加入等體積的異丙醇混勻,12 000r/min離心10min沉淀DNA,棄上清,加入70%乙醇清洗,12 000r/min離心5min,棄上清,風(fēng)干10min,加去離子水溶解基因組DNA.

  1.2利用抑制性PCR作用改善兼并引物擴(kuò)增的原理

  提高兼并引物PCR擴(kuò)增效率和特異性的方法見(jiàn)圖1.在兼并引物的5‘末端分別加上一段非兼并序列,兩條兼并引物上所加的序列不一定與初始模板DNA配對(duì)。在PCR擴(kuò)增目的基因片段時(shí),加入低濃度的兼并引物,同時(shí)加入能與兼并引物中的非兼并區(qū)域序列相匹配的引物(藍(lán)色或紅色表示)。這樣既能夠抑制兼并引物的非特異性擴(kuò)增,使非兼并引物在兩輪PCR循環(huán)后就能正常發(fā)揮作用,同時(shí)也能夠提高PCR擴(kuò)增效率。此外,由于擴(kuò)增過(guò)程中降低了兼并引物的濃度,能夠有效降低非特異性擴(kuò)增。在這種情況下,即使存在非特異性的單引物擴(kuò)增,本方法由于引物增長(zhǎng),導(dǎo)致末端反向重復(fù)序列增長(zhǎng),使抑制性PCR作用增強(qiáng),也能夠達(dá)到抑制非特異性產(chǎn)物擴(kuò)增的作用[3].抑制性PCR的這些特性,可以與降落PCR的最后低退火溫度相結(jié)合。

  1.3引物設(shè)計(jì)及PCR

  根據(jù)GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)里其它聚酮類(lèi)合成酶(Polyketide synthase,PKS)基因片段的序列比對(duì)(圖2),選擇序列保守區(qū),設(shè)計(jì)帶有5’端接頭的兼并引物PKSF和PKSR,及接頭引物T3P和SP6P.設(shè)計(jì)的引物序列 如 下:PKSF (5'-GAATTAACCCTCACTAAAGGGARGCNBHNCARHTNGAYCCNCARCA-3‘),PKSR(5'-GGATTTAGGTGACACTATAGATNCCNGTNCCRTGNVYYTC-3’),T3P(5'-GAATTA-ACCCTCACTAAAGGG-3‘),SP6P(5'-GGATTTAGGTGACACTATAGA-3’)。在終體積25μL的PCR反應(yīng)液中加入10μmol/L的引物PKSF和PKSR各0.1μL,再加入1mol/L的引物T3P和SP6P各0.5μL,PCR反應(yīng)液的其它成分與普通PCR相似。PCR程序如下:首先94℃預(yù)變性2min;隨后15循環(huán)的94 ℃ 30s,65℃30s(-1℃/循環(huán)),72℃30s;然后30循環(huán)的94℃3s,50℃30s,72℃30s;最后72℃延伸10min.

  2結(jié)果

  2.1擴(kuò)增PKS基因片段

  結(jié)合降落PCR與抑制性PCR,本研究利用改變?cè)O(shè)計(jì)的引物擴(kuò)增了溫泉底泥樣品微生物的PKS基因片段,PCR擴(kuò)增后的產(chǎn)物經(jīng)電泳檢測(cè),含有目的片段(圖3箭頭所示,泳道1和2為兩次獨(dú)立PCR)。目的片段經(jīng)切膠回收后,克隆到pUCm-T載體(Sangon Biotech)。隨機(jī)挑選兩個(gè)用于測(cè)序。

  2.2獲得PKS基因片段序列分析

  兩個(gè)克隆獲得的核酸序列及翻譯的氨基酸如圖4所示。兩個(gè)克隆除了其兼并引物區(qū)序列不一致外,其余序列相同,證明為同一物種來(lái)源的基因片 段。將 除 兼 并 引 物 區(qū) 域 的 核 酸 翻 譯 成 氨 基 酸 序 列 后,利 用BLASTP與GenBank上的蛋白質(zhì)序列數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行比對(duì),發(fā)現(xiàn)其與Gen-Bank上序列號(hào)為gb|AAO39790.1|的序列相似度最高,為77%.該序列是一種未知微生物的PKS基因片段,證明本研究獲得了新的PKS基因片段。

  3討論

  為了提高兼并引物的擴(kuò)增效率和特異性,本研究改進(jìn)了兼并引物的設(shè)計(jì)方法,延長(zhǎng)了兼并引物,使其5‘增加了一段接頭序列,利用該接頭序列相匹配的引物,可以提高原有兼并引物擴(kuò)增的效率。同時(shí)也由于引入了這段接頭序列,使PCR可以在引物濃度較低的條件下進(jìn)行,提高了PCR擴(kuò)增的特異性,另一方面,對(duì)于產(chǎn)生的非特異性的單引物擴(kuò)增,則有較強(qiáng)的抑制性PCR作用,降低了非特異性產(chǎn)物的擴(kuò)增效率。利用該方法,本研究擴(kuò)增獲得了一種新的PKS基因的片段,證明該方法能夠?qū)崿F(xiàn)相似基因的高效擴(kuò)增。

  參考文獻(xiàn):

  [1]Knoth K,Roberds S,Poteet C,et al.Highly degenerate,inosine-containing primers specifically amplify rare cDNA using the polymerasechain reaction[J].Nucleic Acids Research,1988,16(22):10932.

  [2]Don R H,Cox P T,Wainwright B J,et al.'Touchdown'PCR to circumvent spurious priming during gene amplification[J].NucleicAcids Research,1991,19(14):4008.

  [3]Dai Z M,Zhu X J,Chen Q,et al.PCR-suppression effect:kinetic analysis and application to representative or long-molecule biasedPCR-based amplification of complex samples[J].Journal of Biotechnology,2007,128(3):435-443.

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